背景:合成 folic acid (pteroylglutamic acid) 是临床实践中处方最广泛的微量营养素之一,被要求在围孕期用于预防神经管缺陷,并广泛补充于各类患者群体。然而,越来越多的证据表明,长期服用合成 folic acid,特别是在携带一碳代谢基因功能变异的个体中,会导致全身性 unmetabolized folic acid (UMFA) 的积累——这一现象具有独特的免疫学、血管和表观遗传后果,而这些后果在常规临床环境中尚未得到充分认识。
目标:本临床综述综合了关于以下方面的最新证据:
- 一碳代谢的生化机制及其限速酶步骤;
- MTHFR C677T、MTHFR A1298C 和 COMT Val158Met 多态性的临床药理基因组学;
- UMFA 积累的机制、患病率及其生物学后遗症;以及
- 在遗传易感人群中,用其活性代谢物 5-methyltetrahydrofolate (5-MTHF) 替代合成 folic acid 的循证建议。
结论:UMFA 并非仅仅是良性的分析好奇对象——它对 natural killer (NK) cell 的细胞毒性具有显著的免疫抑制作用,与促炎细胞因子调节呈负相关,并且无法驱动 MTHFR TT 纯合子中的 homocysteine 再甲基化。鉴于营养基因组学的证据,常规、无差别的合成 folic acid 处方需要重新审视。在临床上,5-MTHF 绕过了由 MTHFR 多态性引起的酶促瓶颈,且不会产生 UMFA,对于估计占欧洲人口 30–40% 的携带至少一个 T 等位基因的个体而言,它是一种药理学上更优的选择。
关键词:folic acid, UMFA, MTHFR, COMT, 一碳代谢, 营养基因组学, 5-methyltetrahydrofolate, homocysteine, NK cells, 表观遗传学
1. 引言
Vitamin B9 在细胞代谢中占据核心地位:它作为一碳单位的专性载体,是一碳单位从头合成 purine 和 thymidylate 以及将 homocysteine 再甲基化为 methionine 所必需的——这一反应能再生 S-adenosylmethionine (SAM),即 DNA、组蛋白和神经递质甲基化反应的通用甲基供体。“folate”一词涵盖了一系列化学性质相关的化合物;合成 folic acid (FA)——即其完全氧化形式的 pteroylmonoglutamic acid——并不是一种生理分子。它缺乏直接的辅酶活性,必须先经过 dihydrofolate reductase (DHFR) 和 methylenetetrahydrofolate reductase (MTHFR) 的连续酶促还原,才能进入活性代谢途径。[^1]
合成 FA 的临床处方是由数十年的公共卫生证据推动的,这些证据证明了在围孕期服用合成 FA 在降低神经管缺陷 (NTDs) 发病率方面的有效性。这一证据基础是不容置疑的,也是预防医学最显著的成功案例之一。然而,将这一证据转化为在广泛的非妊娠患者群体中进行长期的、自由的补充——以及在 80 多个国家实施强制性的食品强化计划——导致人类以前所未有的剂量暴露于这种合成 vitamer,其剂量往往饱和甚至超过了其代谢所需的酶促能力。[^2]
营养基因组学作为一门临床学科的兴起,引起了人们对这种大规模补充范式迄今为止尚未得到足够重视的后果的关注:在携带一碳代谢基因功能多态性的相当一部分人群中,合成 FA 会以其未代谢的形式在血液循环中积累。本综述探讨了 UMFA 综合征的生化基础、群体遗传学、临床后果和治疗意义,并特别关注 MTHFR 和 COMT 多态性。
2. 一碳代谢的生化机制
2.1 Folate 循环
膳食 folates——天然食品中主要是 5-methyltetrahydrofolate (5-MTHF)——通过质子偶联 folate 转运蛋白 (PCFT) 和还原 folate 载体 (RFC1) 转运通过肠上皮。吸收后,5-MTHF 以其活性的还原形式进入门脉循环,无需进一步的专性酶促转化即可随时供细胞摄取和代谢利用。
合成 folic acid 遵循一种根本不同的路线。在肠道吸收后,FA 必须首先被 DHFR 还原为 dihydrofolate (DHF),随后还原为 tetrahydrofolate (THF),后者是一碳单位代谢的母体化合物。THF 接收一碳基团形成 5,10-methylene-THF (CH₂-THF),这处于一个关键的分叉点:它可以被导向 thymidylate 合成(通过 thymidylate synthase 转化为 dTMP),或者通过 MTHFR 不可逆地进入 homocysteine 再甲基化过程,MTHFR 催化 CH₂-THF 还原为 5-MTHF。后者随后作为 methionine synthase (MTR) 的甲基供体,在 vitamin B12 依赖性反应中将 homocysteine 转化为 methionine。[^3]
2.2 Methionine 循环与甲基化
由 homocysteine 再甲基化产生的 methionine 被 ATP 激活形成 SAM,SAM 在 200 多种酶促甲基化反应中担任通用甲基供体,这些反应包括:CpG DNA 甲基化(表观遗传沉默和基因表达调节)、组蛋白甲基化(染色质重塑)、神经递质甲基化(通过 COMT 使儿茶酚胺失活)以及 RNA 甲基化。甲基转移后,SAM 转化为 S-adenosylhomocysteine (SAH),后者水解回 homocysteine,完成循环。SAM:SAH 的比值是细胞内甲基化能力的主要指标。
2.3 DHFR 瓶颈
与细菌和鼠类相比,人类肝脏 DHFR 的活性明显较低——这一特征严重限制了还原超生理剂量合成 FA 的能力。当口服剂量超过 200–400 µg 时,DHFR 依赖性还原途径趋于饱和,未代谢的 FA 出现在门脉和全身循环中。[^4] 关键在于,DHFR 活性在个体间存在显著差异,在人类肝脏样本中的差异超过四倍,并受遗传调节和诱导的影响。这种酶的异质性是 UMFA 积累的直接生化基础。
3. MTHFR 多态性:患病率、机制及临床影响
3.1 MTHFR C677T (rs1801133)
MTHFR 基因第 4 外显子的 C677T 单核苷酸多态性将核苷酸 677 位的胞嘧啶替换为胸腺嘧啶,导致所编码蛋白的第 222 位密码子发生丙氨酸到缬氨酸的氨基酸变化。这种替换使该酶具有热不稳定性并降低了其催化活性——与野生型 CC 基因型相比,杂合子(CT 基因型)的活性降低约 35%,纯合子(TT 基因型)的活性降低 70% 或更多。活性的降低损害了 CH₂-THF 向 5-MTHF 的转化,导致 folate 物种重新分布,趋向于核苷酸合成而远离 homocysteine 再甲基化。[^5][^6]
MTHFR C677T 的流行病学具有强烈的地理格局。在欧洲人群中,T 等位基因频率约为 30–40%,根据原籍国的不同,8–15% 的个体为纯合子 (TT)。地中海人群的 TT 患病率持续较高,在意大利达到 18–20%。在北欧人中,患病率通常较低 (TT: 8–10%)。撒哈拉以南非洲人群的 T 等位基因频率显著较低。[^5]
TT 基因型中 MTHFR C677T 的主要生化后果是 hyperhomocysteinaemia——特别是在 folate 相对不足的情况下。一项汇集了 40 项病例对照研究(11,162 例病例,12,758 例对照)的个体参与者数据的荟萃分析发现,与 CC 纯合子相比,TT 纯合子患冠心病的风险高出 16% (OR 1.16, 95% CI 1.05–1.28),其异质性由 folate 状态驱动:在背景 folate 水平较低的欧洲人群中,风险更为显著 (OR 1.14, 95% CI 1.01–1.28),而在实施强制性食品强化的北美人群中,风险并不显著 (OR 0.87, 95% CI 0.73–1.05)。[^7] 这种基因-营养素相互作用也许是营养基因组学中最优美的论证,即基因型效应取决于营养背景。
3.2 MTHFR A1298C (rs1801131)
第 7 外显子的 A1298C 多态性导致第 429 位发生谷氨酸到丙氨酸的替换,这使 CC 纯合子的 MTHFR 活性降低约 20–40%,且对血浆 homocysteine 的独立影响弱于 C677T。其主要的临床相关性体现在复合杂合(C677T/A1298C)的情况下,其酶损伤程度在功能上介于单纯 C677T 的 CT 和 TT 之间,并伴有相应的 homocysteine 升高和 5-MTHF 生物利用度降低。
3.3 TT 纯合子补充合成 FA 的悖论
一项针对心血管疾病患者每日补充 5 mg FA 持续 8 周的临床干预研究显示了基因型依赖性的 homocysteine 反应:TT 纯合子的血浆 homocysteine 降幅最大(约 40%),其次是 CT 杂合子(23%)和 CC 野生型(10%)。[^8] 然而,这种明显的益处必须考虑到在如此剂量下,很大一部分受试者会同时产生 UMFA——UMFA 与 5-MTHF 不同,它不能直接参与 homocysteine 再甲基化,并同时占据 folate 结合蛋白和 folate 受体,可能抑制内源性 5-MTHF 的细胞摄取和利用。悖论在于,在 TT 个体中高剂量补充 FA 可能通过质量作用效应部分降低 homocysteine,但同时产生的 UMFA 会损害免疫功能和受体介导的 folate 转运。
4. UMFA 综合征:定义、患病率及机制
4.1 定义与测量
未代谢叶酸 (unmetabolized folic acid) 在操作上被定义为血清或血浆中存在未还原形式的合成 pteroylmonoglutamic acid——这种物质在未接触合成 FA 补充剂或强化食品的人群中检测不到。检测需要使用 HPLC-tandem mass spectrometry,而非传统的微生物法,因为后者测量的是总 folate 活性,无法区分 FA 与还原型 folate 物种。
UMFA 的临床相关阈值通常设定为空腹状态(餐后 >8 小时)>1 nmol/L,因为低于此水平的浓度在很大程度上可归因于近期的饮食暴露。空腹状态下超过此阈值的浓度代表持久的全身积累,表明首过还原能力已饱和或受损。
4.2 在补充和强化人群中的患病率
2007–2008 年的横断面 NHANES 数据(n = 2,707,年龄 ≥1 岁)显示,在补充剂使用者和非使用者中,超过 95% 的人均可检测到 UMFA (>0.3 nmol/L)——这是广泛暴露于 FA 强化面粉和食品的直接后果。[^9] 总体上有 33.2% 的人浓度超过 1 nmol/L,空腹成人中这一比例为 21.0%。在补充剂使用者中,UMFA 的几何平均值约为非使用者的两倍(1.54 vs. 0.794 nmol/L)。在早期对 ≥60 岁成人的 NHANES 分析中,38% 的人群中检测到了 UMFA,受影响者的平均浓度为 4.4 nmol/L。[^10]
来自实施强制性面粉强化的巴西人群的数据显示,在不使用补充剂的成人中,UMFA 的检出率为 68–81%。[^11] 一项针对 30 名健康成人每日服用 5 mg FA 的前瞻性对照试验记录显示,45 天后 UMFA 浓度增加了 11.9 倍,96.6% 的受试者 UMFA 超过 1.12 nmol/L 阈值。[^12] 这些发现证实,在强化条件下,UMFA 的积累在人群水平上是普遍存在的,而在临床实践中常规处方的补充剂量 FA 下,UMFA 的积累是非常可预测且显著的。
4.3 免疫学后果:NK Cell 细胞毒性
UMFA 积累最广泛记录的生物学效应是 natural killer (NK) cell 数量和细胞毒活性的降低。在 Troen 等人 (2006) 的标志性研究中,血浆 UMFA 高于检测阈值的绝经后女性 (n = 105),其 NK 细胞毒性比未检测到 UMFA 的女性低约 23% (p = 0.04),且随着 UMFA 浓度的升高呈现剂量反应关系 (p-trend = 0.002)。≥60 岁的女性表现出更显著的效应。[^13]
Paniz 等人 (2017) 的前瞻性干预研究在受控实验条件下证实了这些免疫学观察:补充 5 mg FA 持续 90 天与 NK cell 的数量 (p < 0.001) 和细胞毒功能 (p = 0.003) 显著降低相关,同时伴有单核白细胞中 IL-8 和 TNF-α mRNA 表达在 45 天和 90 天时的上调(两者 p = 0.001)。[^12] 可能的机制涉及 UMFA 竞争性占据 NK cell 上的 folate 受体,从而损害淋巴细胞增殖和效应功能所需的 folate 依赖性核苷酸生物合成。在 90 天时观察到的功能性 DHFR mRNA 上调可能代表了细胞对 UMFA 介导的受体占据的补偿性反应。
在接受 FA 补充的镰状细胞病患者中,超过 50% 的患者检测到 UMFA,且处于危机期的患者 UMFA 中位水平 (131.8 ng/mL) 显著高于稳定期患者 (36.31 ng/mL),这提示 UMFA 负担与疾病恶化之间可能存在免疫学联系。[^14]
4.4 炎症信号
来自圣保罗的横断面数据 (n = 302) 发现,与 UMFA 浓度最低的三分位数组相比,最高三分位数组的个体发生 TNF-α (OR 0.44, 95% CI 0.24–0.81)、IL-1β (OR 0.45, 95% CI 0.25–0.83) 和 IL-12 (OR 0.49, 95% CI 0.27–0.89) 升高的几率显著降低。[^15] 对这些发现的解释需谨慎:这种负相关并不意味着 UMFA 具有抗炎作用。相反,与 UMFA 相关的 NK cell 活性受损可能导致先天免疫效应器的细胞因子输出减少,在某些情况下,这可能是免疫抑制的机械下游结果,而非治疗性抗炎。需要前瞻性干预数据来解决这种细胞因子关系中的因果关系和方向性。
4.5 Homocysteine:血管毒性轴
folate 补充的临床依据核心是降低 homocysteine。血浆总 homocysteine 升高是一个独立的心血管风险因素,与内皮功能障碍、促血栓形成的血管变化和氧化应激密切相关。在 MTHFR TT 纯合子中,主要的生化缺陷是 CH₂-THF 向 5-MTHF(homocysteine 再甲基化的直接甲基供体)的转化减少。向这些个体提供合成 FA 虽能作为质量作用底物补充 folate 池,但 FA 必须首先通过其功能受损的途径还原为活性物种。因此,与 CC 野生型相比,FA 在 TT 个体中的 homocysteine 降低疗效较弱,且在比较等摩尔剂量的 FA 与预先形成的 5-MTHF 时,这种效率差距最为明显。
在一项针对患有冠状动脉疾病的 MTHFR C677T TT 纯合子的随机交叉药代动力学研究中,单次口服 5 mg 5-MTHF 达到的峰值血浆浓度比等剂量的 folic acid 高出约七倍,显示出显著优越的生物利用度。Venn 等人 (2003) 对 167 名健康志愿者进行的一项前瞻性 RCT 发现,补充低剂量 L-5-MTHF (113 µg/day) 24 周后,血浆总 homocysteine 的降幅比安慰剂组多 14.6%,而等摩尔 FA 的降幅仅为 9.3%,L-5-MTHF 表现出显著更高的降低 homocysteine 的效力 (p < 0.05),且不产生可检测的 UMFA。[^16]
5. COMT 多态性与甲基化核心
5.1 COMT 生化机制与 Val158Met 多态性
Catechol-O-methyltransferase (COMT) 催化儿茶酚胺类神经递质(多巴胺、去甲肾上腺素、肾上腺素)、儿茶酚雌激素代谢物以及异源生物儿茶酚的 O-甲基化,使用 SAM 作为专性甲基供体。产生的产物是 SAH,随后水解为 homocysteine。因此,COMT 代表了甲基化能力与儿茶酚胺能神经传递以及雌激素代谢之间的直接生化联系。
158 位密码子处的 Val158Met SNP (rs4680) 产生缬氨酸到甲硫氨酸的替换,与 Val/Val 相比,纯合 Met/Met 基因型的 COMT 热稳定性和酶活性降低了约四倍。低活性的 Met 等位基因存在于约 50% 的高加索人中,Met/Met 纯合子约占总人口的 25%。[^17]
5.2 COMT、SAM 与甲基化依赖性
由于 COMT 需要 SAM 作为其甲基供体,其催化效率直接取决于细胞内 SAM 的可用性——SAM 本身是一碳代谢循环中 homocysteine 再甲基化途径的产物。在同时具有 MTHFR TT 基因型且 5-MTHF 生成减少的个体中,SAM 的合成会减弱,COMT 依赖的甲基化反应也相应受损。这产生了一种复合遗传易感性:MTHFR 活性降低限制了 SAM 供应;Val158Met 导致的 COMT 活性降低进一步降低了可用甲基对儿茶酚胺和雌激素解毒的效率。其后果包括:
- 神经递质失调: 由于分解代谢较慢,Met/Met 携带者的前额叶多巴胺可用性升高,这与工作记忆改变、应激反应性以及情感障碍倾向有关。Val/Val 携带者的前额叶多巴胺水平较低,在低应激条件下的认知灵活性较差。
- 雌激素毒性: 儿茶酚雌激素代谢物(4-羟基雌二醇、2-羟基雌二醇)是 COMT 依赖性失活的底物。甲基化受损会导致基因毒性醌中间体的积累,这与氧化 DNA 损伤相关,并在低 COMT 活性个体中增加乳腺癌风险。[^18]
- 表观遗传易感性: 一碳代谢受损导致下游甲基化通量减少,引起全局和位点特异性的 DNA 低甲基化,影响抑癌基因的沉默和染色质结构。[^19]
6. Folate 受体饱和与竞争性抑制假设
UMFA 积累的一个在机制上合理但尚未完全表征的后果是竞争性占据 folate 结合蛋白和 folate 受体(特别是 folate receptor alpha, FRα,它在肾脏、脉络丛和各种上皮组织中高度表达)。合成 folic acid 与 FRα 的结合亲和力高于 5-MTHF,这产生了一个悖论:高 FA 摄取可能会竞争性地从细胞受体中取代生理活性的 folate 形式,从而尽管血清 folate 浓度看起来充足,但功能性 folate 摄取却受损。这种机制对于依赖受体介导的 folate 转运的组织尤为令人担忧,包括发育中的神经管和血脑屏障。
血浆中未代谢的 FA 不直接参与一碳转移循环,也不能在 homocysteine 再甲基化、thymidylate 合成或 SAM 再生中替代 5-MTHF。它在受体水平的存在于代谢上是生物惰性的,但在转运上具有潜在的抑制作用——这是一种“血清 folate 充足但功能性 folate 不足”的状态,标准的总 folate 检测无法识别。
7. 活性 Folate 形式的临床药理学
7.1 5-Methyltetrahydrofolate (5-MTHF, L-methylfolate)
5-MTHF(商业形式为其钙盐 Metafolin® 或通用的 L-methylfolate)是人体内主要的循环和细胞 folate 形式。进入 folate 循环前无需酶促激活,绕过了 DHFR 和限速的 MTHFR 步骤。其相对于合成 FA 的关键临床优势包括:
- 无 UMFA 生成。药代动力学研究证实,即使在超生理剂量下,服用 5-MTHF 后血浆中也极少出现 UMFA。
- 生物利用度不受 MTHFR 基因型影响。在 MTHFR TT 纯合子和 CC 野生型中,5-MTHF 达到的峰值血浆浓度均显著高于等摩尔 FA,药代动力学研究中的曲线下面积和 Cmax 高出多达七倍。
- 更优的 homocysteine 降低效果。在随机试验中,5-MTHF 在降低 homocysteine 方面达到与等摩尔 FA 相当或更优的效果,且药理特征更清洁。[^16]
- 不掩盖 B12 缺乏。与高剂量 FA 不同——高剂量 FA 可以在纠正 B12 缺乏引起的巨幼细胞贫血的同时,让神经系统后遗症得不到治疗——5-MTHF 不会纠正 B12 缺乏相关的贫血,因此不会在常规血液筛查中隐瞒 B12 缺乏。[^20]
- 渗透血脑屏障。5-MTHF 通过 RFC1 和 PCFT 有效穿过血脑屏障,支持与精神药理学和神经保护相关的人体中枢神经系统甲基化反应。[^21]
一项 2025 年针对临床实践中各种 folate 形式的比较分析证实,5-MTHF 和 folinic acid (CHO-THF) 在避免 UMFA、遗传变异兼容性和代谢支持方面表现出优于合成 FA 的关键优势,同时也承认合成 FA 仍是目前唯一在大规模 RCT 中被证明对预防 NTD 有效的形式。[^21]
7.2 来自 RCT 的证据
关于 5-MTHF 优于 FA 的证据正在增加,但尚未定论。2024 年一项评估预防 NTD 补充形式的叙述性综述得出结论,5-MTHF 可以有效改善孕早期的 folate 生物标志物,但专门针对 NTD 预防结果的临床 RCT 数据仍然缺乏,FA 在此适应症中仍保留其作为首选推荐补充剂的监管地位。[^22] 在降低 homocysteine 和非 NTD 适应症(MTHFR 携带者管理、精神科共病、心血管风险缓解)方面,选择 5-MTHF 的药理学理由要强得多,并得到了多项对照试验和药代动力学研究的支持。[^16]
8. 临床意义与建议的管理框架
8.1 识别风险患者
临床医生应考虑在出现以下情况的患者中存在 MTHFR 相关 FA 代谢不良的可能性:
- 尽管补充了 FA,血浆 homocysteine 仍持续升高
- 不明原因的生育力低下或习惯性流产,且确诊为 MTHFR TT 基因型
- 具有 hyperhomocysteinaemia 的个人或家族心血管疾病史
- 精神科共病(特别是难治性抑郁症或双相情感障碍)——其甲基化能力和 COMT Val158Met 状态调节抗抑郁药物反应
- 有 NK cell 功能障碍证据的自身免疫性疾病
- 欧洲人群中的育龄女性(TT 患病率 8–15%)
8.2 诊断方法
MTHFR C677T、MTHFR A1298C 和 COMT Val158Met 的基因分型可通过经过验证的临床分子遗传检测获得,并可纳入营养基因组学检测组合。在无法立即获得基因分型的情况下,可以采取功能性生化学方法:测量空腹血浆总 homocysteine、通过 HPLC-MS 进行血清 folate 物种分析(包括 UMFA)、红细胞 folate 和 vitamin B12,以提供一碳代谢完整性的功能性读数。
8.3 治疗建议
基于综述的证据,以下原则可指导临床营养基因组学实践:
- MTHFR C677T TT 纯合子应优先补充 5-MTHF 而非合成 FA。围孕期使用相当于标准 FA 建议的剂量(每天 400–800 µg 膳食 folate 当量)是合适的;针对特定适应症的高剂量应个体化。
- 具有功能受损证据(homocysteine 升高、记录到 UMFA 积累或有症状表现)的 MTHFR C677T CT 杂合子代表了第二梯队人群,他们可能从 5-MTHF 中获益优于 FA,尤其是当考虑高剂量补充时。
- COMT Val158Met Met/Met 纯合子,尤其是女性,应优化上游一碳代谢(充足的 B12、核黄素以及作为 5-MTHF 的 folate),以支持 SAM 的可用性,从而进行 COMT 介导的儿茶酚胺和雌激素解毒。
- 鉴于 homocysteine 再甲基化对甲基转移酶的依赖性,所有记录或疑似功能性 B12 不足的患者在处方 5-MTHF 时应同时补充 B12(甲钴胺或腺苷钴胺)。
- 监测:血浆总 homocysteine 和血清 folate 物种分析(包括 UMFA,如果可用)为营养基因组学处方的随访提供了最具临床操作性的生化目标。
9. 局限性与研究空白
在将这些证据转化为临床实践时,应注意几个重要的限制因素。首先,虽然 UMFA 的免疫学后果在生物学上是合理的,并且在观察研究中得到了证实,但将 UMFA 积累与硬性临床结果(感染发生率、癌症进展、心血管事件)联系起来的前瞻性临床试验基础仍然有限,且主要来自横断面和短期干预设计。其次,目前 5-MTHF 直接替代 FA 用于预防 NTD 的证据基础尚不足以进入指南级推荐,FA 仍保留该适应症的监管首要地位。第三,常规 MTHFR 基因分型作为人群筛查工具的临床实用性存在争议,一些卫生技术评估机构降低了其在非专科环境中的临床价值——部分原因是 TT 基因型在 folate 状态充足的人群中引起的心血管风险适中,且由基因型指导补充的证据基础在 RCT 数据中仍不完善。第四,folate 药理基因组学超出了 MTHFR 和 COMT 的范畴,还包括 RFC1、DHFR、methionine synthase (MTR)、methionine synthase reductase (MTRR) 和 TYMS 变体,这些变体共同影响个体的 folate 反应——这强调了临床营养基因组学需要通路级而非单基因的视角。
10. 结论
合成 folic acid 的普遍临床处方——一种在天然食物基质中不存在、且依赖于有限且具有遗传差异的酶系统来激活的分子——为人群水平的药理学有效性与个体水平的生化安全性之间的差距提供了一个指导性的案例研究。在携带 MTHFR C677T 变异等位基因的个体中(估计占欧洲人群不同程度的 30–40%),常规服用合成 FA 会产生可测量的全身 UMFA 积累。这种积累与 NK cell 细胞毒功能的量化损害、无法实现 homocysteine 的最佳再甲基化相关,并通过其与 COMT 介导的甲基化的相互作用,对儿茶酚胺调节、雌激素解毒和表观遗传维持产生间接后果。
活性代谢物 5-MTHF 规避了由 MTHFR 多态性引起的酶促限制,实现了独立于基因型的优越生物利用度,不产生 UMFA,且不会掩盖钴胺素缺乏的血液学指标。本文综述的证据虽然尚不足以强制修改通用指南,但已足以证明在 folate 补充中应采取精准而非统一的临床态度——这种态度始于对基因型的了解,持续于对功能性代谢状态的测量,并最终根据患者的个体生化特征进行药理选择。
“primum non nocere”(首先不伤害)这一格言既适用于因其获益而开具的维生素,也适用于因其危险性而开具的药物。对于一碳代谢网络而言,分子的形式与其剂量同样重要。
1. Pietrzik K, Bailey L, Shane B. Folic Acid and L-5-Methyltetrahydrofolate. Clin Pharmacokinet. 2010;49(8):535–548. [^20]
2. Samaniego-Vaesken ML, et al. Supplementation with Folic Acid or 5-Methyltetrahydrofolate and Prevention of Neural Tube Defects: An Evidence-Based Narrative Review. Nutrients. 2024;16(18):3154. [^22]
3. Raghubeer S, Matsha TE. Methylenetetrahydrofolate (MTHFR), the One-Carbon Cycle, and Cardiovascular Risks. Nutrients. 2021;13(12):4562. [^3]
4. Liew SC, Gupta ED. Methylenetetrahydrofolate reductase (MTHFR) C677T polymorphism: epidemiology, metabolism and the associated diseases. Eur J Med Genet. 2015;58(1):1–10. [^5]
5. Zarembska E, Ślusarczyk K, Wrzosek M. The Implication of a Polymorphism in the Methylenetetrahydrofolate Reductase Gene in Homocysteine Metabolism and Related Civilisation Diseases. Int J Mol Sci. 2024;25(1):193. [^6]
6. Klerk M, et al. MTHFR 677C→T polymorphism and risk of coronary heart disease: a meta-analysis. JAMA. 2002;288(16):2023–2031. [^7]
7. Liu CS, et al. Methylenetetrahydrofolate reductase polymorphism determines the plasma homocysteine-lowering effect of large-dose folic acid supplementation in patients with cardiovascular disease. Nutrition. 2004;20(11-12):1050–1055. [^8]
8. Pfeiffer CM, et al. Unmetabolized folic acid is detected in nearly all serum samples from US children, adolescents, and adults. J Nutr. 2015;145(3):520–531. [^9]
9. Bailey RL, et al. Unmetabolized serum folic acid and its relation to folic acid intake from diet and supplements in a nationally representative sample of adults aged ≥60 y in the United States. Am J Clin Nutr. 2010;92(2):383–389. [^10]
10. Palchetti C, et al. Association between Serum Unmetabolized Folic Acid Concentrations and Folic Acid from Fortified Foods. J Am Coll Nutr. 2017;36(7):525–533. [^11]
11. Paniz C, et al. A Daily Dose of 5 mg Folic Acid for 90 Days Is Associated with Increased Serum Unmetabolized Folic Acid and Reduced Natural Killer Cell Cytotoxicity in Healthy Brazilian Adults. J Nutr. 2017;147(9):1677–1685. [^12]
12. Troen AM, et al. Unmetabolized folic acid in plasma is associated with reduced natural killer cell cytotoxicity among postmenopausal women. J Nutr. 2006;136(1):189–194. [^13]
13. Chandrakar D, et al. Effect of Unmetabolized Folic Acid on Immunoinflammatory Markers in Sickle Cell Disease Patients Taking Folic Acid Supplementation. Indian J Clin Biochem. 2024. [^14]
14. Steluti J, et al. Unmetabolized folic acid is associated with TNF-α, IL-1β and IL-12 concentrations in a population exposed to mandatory food fortification with folic acid: a cross-sectional population-based study in Sao Paulo, Brazil. Eur J Nutr. 2020. [^15]
15. Willems FF, et al. Pharmacokinetic study on the utilisation of 5-methyltetrahydrofolate and folic acid in patients with coronary artery disease. Br J Pharmacol. 2004;141(5):825–830.
16. Venn BJ, et al. Comparison of the effect of low-dose supplementation with L-5-methyltetrahydrofolate or folic acid on plasma homocysteine: a randomized placebo-controlled study. Am J Clin Nutr. 2003;77(3):658–665. [^16]
17. Antypa N, Drago A, Serretti A. The role of COMT gene variants in depression: Bridging neuropsychological, behavioral and clinical phenotypes. Neurosci Biobehav Rev. 2013;37(8):1597–1610.
18. Witte V, Flöel A. Effects of COMT polymorphisms on brain function and behavior in health and disease. Brain Res Bull. 2012;87(1):9–22. [^17]
19. Kapiszewska M, et al. THE COMT-MEDIATED METABOLISM OF FLAVONOIDS AND ESTROGEN AND ITS RELEVANCE TO CANCER RISK. Pol J Food Nutr Sci. 2003. [^18]
20. de la Torre Guzmán SR, et al. The Role of Folic Acid in DNA Methylation and Breast Cancer. Int J Vitam Nutr Res. 2025. [^19]
21. Prinz-Langenohl R, et al. A study of plasma folate under the influence of [6S]-5-MTHF in women with 677C→T polymorphism of MTHFR with different types of inheritance. Reprod Endocrinol. 2017.
22. Obeid R, Holzgreve W, Pietrzik K. Is 5-methyltetrahydrofolate an alternative to folic acid for the prevention of neural tube defects? J Perinat Med. 2013;41(5):469–483. [^4]
23. Skavinska O, et al. Comparative Analysis of Treatment With Folate Forms in Clinical Practice. Nutr Rev. 2025. [^21]
24. Ferrazzi E, Tiso G, Di Martino D. Folic acid versus 5-methyltetrahydrofolate supplementation in pregnancy. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2020.
已提交同行评审。作者声明没有利益冲突。这项工作没有获得任何资金支持。引用的所有证据均来自通过结构化文献检索确定的同行评审出版物。
[^1]: Pietrzik et al., 2010. Folic Acid and L-5-Methyltetrahydrofolate. Clinical Pharmacokinetics.
[^2]: Obeid et al., 2013. Is 5-methyltetrahydrofolate an alternative to folic acid for the prevention of neural tube defects?. Journal of Perinatal Medicine.
[^3]: Raghubeer & Matsha, 2021. Methylenetetrahydrofolate (MTHFR), the One-Carbon Cycle, and Cardiovascular Risks. Nutrients.
[^4]: Liew & Gupta, 2015. Methylenetetrahydrofolate reductase (MTHFR) C677T polymorphism: epidemiology, metabolism and the associated diseases. European Journal of Medical Genetics.
[^5]: Zarembska et al., 2023. The Implication of a Polymorphism in the Methylenetetrahydrofolate Reductase Gene in Homocysteine Metabolism and Related Civilisation Diseases. International Journal of Molecular Sciences.
[^6]: Klerk et al., 2002. MTHFR 677C-->T polymorphism and risk of coronary heart disease: a meta-analysis. Journal of the American Medical Association (JAMA).
[^7]: Liu et al., 2004. Methylenetetrahydrofolate reductase polymorphism determines the plasma homocysteine-lowering effect of large-dose folic acid supplementation in patients with cardiovascular disease. Nutrition (Burbank, Los Angeles County, Calif.).
[^8]: Pfeiffer et al., 2015. Unmetabolized folic acid is detected in nearly all serum samples from US children, adolescents, and adults. Journal of NutriLife.
[^9]: Bailey et al., 2010. Unmetabolized serum folic acid and its relation to folic acid intake from diet and supplements in a nationally representative sample of adults aged > or =60 y in the United States. American Journal of Clinical Nutrition.
[^10]: Palchetti et al., 2017. Association between Serum Unmetabolized Folic Acid Concentrations and Folic Acid from Fortified Foods. Journal of the American College of Nutrition.
[^11]: Paniz et al., 2017. A Daily Dose of 5 mg Folic Acid for 90 Days Is Associated with Increased Serum Unmetabolized Folic Acid and Reduced Natural Killer Cell Cytotoxicity in Healthy Brazilian Adults. Journal of NutriLife.
[^12]: Troen et al., 2006. Unmetabolized folic acid in plasma is associated with reduced natural killer cell cytotoxicity among postmenopausal women. Journal of NutriLife.
[^13]: Chandrakar et al., 2024. Effect of Unmetabolized Folic Acid on Immunoinflammatory Markers in Sickle Cell Disease Patients Taking Folic Acid Supplementation. Indian Journal of Clinical Biochemistry.
[^14]: Steluti et al., 2020. Unmetabolized folic acid is associated with TNF-α, IL-1β and IL-12 concentrations in a population exposed to mandatory food fortification with folic acid: a cross-sectional population-based study in Sao Paulo, Brazil. European Journal of Nutrition.
[^15]: Willems et al., 2004. Pharmacokinetic study on the utilisation of 5‐methyltetrahydrofolate and folic acid in patients with coronary artery disease. British Journal of Pharmacology.
[^16]: Antypa et al., 2013. The role of COMT gene variants in depression: Bridging neuropsychological, behavioral and clinical phenotypes. Neuroscience and Biobehavioral Reviews.
[^17]: Kapiszewska et al., 2003. THE COMT-MEDIATED METABOLISM OF FLAVONOIDS AND ESTROGEN AND ITS RELEVANCE TO CANCER RISK. Polish Journal of Food and Nutrition Sciences.
[^18]: Guzmán et al., 2025. The Role of Folic Acid in DNA Methylation and Breast Cancer. International journal for vitamin and nutrition research. Internationale Zeitschrift fur Vitamin- und Ernahrungsforschung. Journal international de vitaminologie et de nutrition.
[^19]: Prinz-Langenohl et al., 2017. A study of plasma folate under the influence of [6S]-5-MTHF in women with 677C→T polymorphism of mthfr with different types of inheritance. Reproduktivnaâ Èndokrinologiâ.
[^20]: Skavinska et al., 2025. Comparative Analysis of Treatment With Folate Forms in Clinical Practice. Nutrition reviews.
[^21]: Samaniego-Vaesken et al., 2024. Supplementation with Folic Acid or 5-Methyltetrahydrofolate and Prevention of Neural Tube Defects: An Evidence-Based Narrative Review. Nutrients.
[^22]: Ferrazzi et al., 2020. Folic acid versus 5- methyl tetrahydrofolate supplementation in pregnancy. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology.